中國科學院華南植物園農業生物技術研究中心在線發表了《A simple and efficient in planta transformation method based on the active regeneration capacity of plants》一文。在該文獻里，采用了LUYOR - 3415RG便攜式雙波長熒光蛋白激發光源來用于綠色熒光蛋白（GFP）的表達。
植物遺傳轉化技術是植物基因工程以及現代農業分子育種的工具。不過，現行的植物遺傳轉化方案不僅復雜，而且效率低下，這限制了大多數資源植物或者農作物的遺傳改造，已然成為植物資源開發與利用的技術壁壘。所以，研發高效且適用性強的植物遺傳轉化技術已經成為植物或者農業科研領域的重要研究趨向。
研究人員歷經多年的探索與研究，成功構建了一種基于植物主動再生能力的新型植物遺傳轉化技術（Regenerative Activity - dependent in Planta Injection Delivery，RAPID）。
RAPID方法主要基于植物的主動再生能力這一特性。首先，在植物材料的選擇上，傾向于那些具有強再生能力的植物種類，例如甘薯。研究人員對甘薯進行多種遞送方式的細致測試，發現甘薯莖段注射遞送是一種極為有效的方式。這種方式能夠使目的基因快速進入植物體內，并且迅速定位到合適的細胞組織，進而快速獲取陽性器官和轉化個體。
在轉化過程中，研究人員還對多個關鍵因素進行優化。在農桿菌菌種方面，精心挑選適宜的菌種，確保其具有高效的基因傳遞能力；對于侵染濃度，通過大量的實驗確定最佳濃度范圍，使得農桿菌既能有效地將目的基因導入植物細胞，又不會對植物細胞造成過度的毒害作用；在化學活性劑的使用上，也進行了優化篩選，合適的化學活性劑有助于提高細胞膜的通透性，增強目的基因的導入效率。
同時，該方法成功實現了多種報告基因和遺傳編輯工具的應用。這不僅體現了RAPID方法的通用性，也為后續更深入的研究提供了更多的可能性。
隨后，借助遺傳學和細胞學分析方法確定了植物分生組織的高效轉染以及新生轉化器官個體的快速再生。從遺傳學角度來看，通過對轉化后植物的基因檢測和分析，發現目的基因能夠穩定地整合到植物的基因組中，并且能夠按照預期的方式進行表達。在細胞學層面，觀察到轉化后的植物細胞在分生組織區域呈現出特殊的生理變化，這些變化與細胞的再生和分化密切相關，這也正是能夠迅速且高效地獲得穩定轉基因植株的根本所在。
當前，RAPID方法已經成功應用于甘薯、馬鈴薯、厚藤等無性繁殖的經濟作物或者資源植物。
相較于傳統遺傳轉化方法，RAPID方法具有明顯的優勢。其轉化效率更高，可提高20至100倍；操作流程更加簡便，能縮短2至3倍的時間；并且不需要昂貴且復雜的組織培養過程。RAPID方法克服了傳統方法在快速遺傳轉化方面的局限，突破了各類資源植物開發和利用的瓶頸。
一、RAPID方法在植物遺傳轉化領域的研究前景
1.廣泛的植物物種適用性
基于植物主動再生能力和無性繁殖的特性，RAPID方法有著廣闊的應用潛力。許多植物都具有不同程度的再生能力，這意味著該方法有希望擴展到更多的植物物種。除了已經應用的無性繁殖作物外，對于一些具有特殊再生機制的野生植物資源，也可能通過適當調整技術參數來應用RAPID方法。例如，一些多年生草本植物或者木本植物的營養器官再生能力如果能夠被深入挖掘，將為這些植物的遺傳轉化提供新的途徑。
2.性狀改良與種質創新
在特色資源植物和經濟作物方面，RAPID方法為實現性狀改良與種質創新提供了有力的工具。通過高效地將特定的基因導入植物基因組，可以對植物的產量、品質（如營養成分、口感等）、抗逆性（如抗病蟲害、耐旱、耐寒等）等重要農藝性狀進行精準調控。例如，在一些重要的糧食作物中導入抗蟲基因，可以提高作物的產量穩定性；在水果類作物中導入與果實品質相關的基因，可以改善果實的色澤、甜度等品質特性。
3.推動基礎研究和應用研究發展
在基礎研究方面，RAPID方法有助于深入探究植物的生長發育、基因表達調控以及細胞再生等生物學過程。研究人員可以更方便地構建各種轉基因植物模型，研究基因功能及其相互關系。在應用研究領域，該方法能夠加速新品種的培育進程。對于農業育種來說，可以更快地將具有優良性狀的基因組合到目標作物中，縮短育種周期，提高育種效率，從而更快地滿足市場和產業發展的需求。
4.促進植物資源的開發利用
許多植物資源由于其遺傳轉化的困難而未能得到充分的開發利用。RAPID方法的出現打破了這種限制，使得更多的植物資源可以被納入到現代生物技術的應用范疇。這不僅有助于挖掘植物資源的潛在價值，如藥用植物的活性成分開發、工業原料植物的培育等，還能夠保護生物多樣性，通過合理的開發利用促進植物的可持續發展和生態保護。
文獻摘要：
Fluorescence of the mScarlet reporter in live transgenic tissues was observed under a fluorescence stereo microscope (M205 FA, Leica, Germany) with a red fluorescence filter (Exc 540–580 nm, Em 593–667 nm). The spontaneous fluorescence spectra of sweet potato were observed under a confocal microscope (SP8 STED 3X, Leica, Germany). One-week-old adventitious roots were freshly selected for testing of root samples, and the third mature leaf of nascent shoots was selected for testing of leaf samples. Transgenic sweet potato materials containing the GFP reporter were observed using a dual-wavelength fluorescent protein excitation light source (Exc 440 nm, Em 500 nm, 3415RG, LUYOR, China). The regions near the phloem at the base of the stems were peeled to reduce epidermal autofluorescence, and the whole plant was irradiated with a light source under dark conditions. Green fluorescence was detected in the inner regions of the stems of positively transformed plants.
大致翻譯：在熒光立體顯微鏡下（Exc540-580nm，M205FA，徠卡）和紅色熒光濾光鏡（Em593-667nm）下觀察mScarlet報告基因在活轉基因組織中的熒光。在共聚焦顯微鏡（SP8 STED 3X，徠卡）下觀察了甘薯的自發熒光光譜。新鮮選擇1周齡的不定根進行根樣品檢測，選擇初芽第三成熟葉進行葉片樣品檢測。利用雙波長熒光蛋白激發光源（Exc 440 nm，Em 500 nm，3415RG，LUYOR，China）觀察了含有GFP報告基因的轉基因甘薯材料。將莖基部韌皮部附近的區域去皮，以減少表皮的自身熒光，并在黑暗條件下用光源照射整個植株。在陽性轉化植株的莖的內部區域檢測到綠色熒光
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